L’Unità MOTax (Marine Organism Taxonomy), in collaborazione con il Museo Vivo del Mare “MUSea”, organizza la sesta edizione della Summer School: “Studio e Monitoraggio delle Praterie di Posidonia oceanica”.
Il corso prevede lezioni frontali, immersioni subacquee ed attività di laboratorio; è rivolto a chi è in possesso di un’adeguata formazione naturalistica e che intenda acquisire le conoscenze necessarie per svolgere analisi sulle praterie di Posidonia oceanica: dalla stesura del piano di campionamento a tutte le attività in mare, dalle analisi di laboratorio alle attività di elaborazione statistica dei dati.
Identificazione dei limiti della prateria, misure di densità, campionamento, fenologia, studio degli epifiti e della fauna associata, queste alcune delle attività che svolgerà il corsista acquisendo manualità e metodologie per il monitoraggio delle praterie. Novità del 2026 è l’introduzione di un modulo sulla tecnica di restauro della prateria di Posidonia oceanica.La Summer School si prefigge l’ulteriore obiettivo di formare i partecipanti all’applicazione della metodologia PREI, Posidonia Rapid Easy Index, strumento metodologico d’indagine dello stato delle praterie di Posidonia oceanica per l’implementazione territoriale delle Direttive Comunitarie Direttiva Quadro Sulle Acque (2000/60/CE) e Direttiva Strategia Marina (2008/56/CE), ISPRA. Il corso, diretto dal dott. Luigi Valiante direttore scientifico del Museo Vivo del Mare, si avvale della collaborazione della Stazione Zoologica Anton Dohrn con la partecipazione del dott. Gabriele Procaccini Dirigente di Ricerca del Dipartimento Ecologia Marina Integrata e del dott. Paolo Fasciglione dell’Unità specializzata in tassonomia MOTax.

La durata è di 5 giorni, le lezioni frontali e le attività di laboratorio si svolgono presso il Museo Vivo del Mare “MUSea” che ha sede al Palazzo Vinciprova di Pioppi (Pollica, SA), mentre le attività di campo (immersioni subacquee) saranno effettuate nell’Area a Tutela “la Punta” di Pioppi, nel Parco Nazionale del Cilento, Vallo di Diano e degli Alburni.

Lezioni frontali

● Fisiologia, ecologia, ruolo ecosistemico, gestione della fascia costiera, conservazione
● Resilienza e capacità di adattamento
● Analisi dei dati, applicazione dell’indice PREI con dimostrazioni pratiche

Immersioni subacquee sulla prateria

● Identificazione dei descrittori fisiografici (tipologia prateria e sua distribuzione, identificazione limiti superiore ed inferiore e tipologia)
● Descrittori strutturali (misure di densità e valutazione dell’indice di copertura)
● Tecniche di campionamento e prelievo dei fasci fogliari
● Campionamento della fauna associata ai rizomi (sorbona)
● Campionamento della fauna vagile associata alle foglie (retino manicato)
● Tecnica di restauro delle praterie di Posidonia oceanica

Attività di laboratorio

● Descrittori morfometrici (fenologia)
● Analisi della comunità epifita
● Studio della fauna vagile

Crediti formativi

• Attestato di partecipazione
• Certificazione di immersioni scientifiche

Docenti

● Luigi Valiante (Museo Vivo del Mare di Pioppi)
● Gabriele Procaccini (Stazione Zoologica Anton Dohrn Napoli)
● Paolo Fasciglione (Stazione Zoologica Anton Dohrn Napoli)
● Michele Scardi (Università degli Studi di Roma Tor Vergata)

Quota di partecipazione

450,00 euro, la quota comprende: 

5 gg di corso presso il Museo Vivo del Mare di Pioppi (Palazzo Vinciprova):

● attività scientifiche in immersione sulla prateria di Posidonia oceanica;
● attività di laboratorio presso le sale attrezzate del Centro Velico Anemos di Pioppi;
● lezioni frontali da parte del personale scientifico;
● materiale didattico;
● cena sociale/coffee break
● alloggio in foresteria, per i primi 10 iscritti, grazie alla sponsorizzazione CARISAL

BORSA DI STUDIO EUGENIO FRESI

Per il 2026 è prevista 1 borsa di studio per la partecipazione al corso finanziata dal Rotary Club di Battipaglia.
Invio candidature, modalità di partecipazione alle borse ed un "ricordo" del professore Eugenio Fresi al link sotto:
Bando borsa di studio Eugenio Fresi
Scadenza presentazione domande per la partecipazione alle borse 31 maggio 2026

Organizzatori: Paolo Fasciglione (SZN), Luigi Maria Valiante (MUSea)

Info e domanda di partecipazione alla summer school

● www.centrostudisealab.it
● Questo indirizzo email è protetto dagli spambots. È necessario abilitare JavaScript per vederlo.
● Questo indirizzo email è protetto dagli spambots. È necessario abilitare JavaScript per vederlo.

Fine iscrizioni: 15 luglio 2026
Conferma partecipazione e pagamento: 31 luglio 2026

 Post Doc

Dipartimento di Biologia ed Evoluzione degli Organismi Marini

Stazione Zoologica Anton Dohrn
Villa Comunale
80121 Napoli - Italia

e-mail: Questo indirizzo email è protetto dagli spambots. È necessario abilitare JavaScript per vederlo.

Curriculum vitae 

Interessi di Ricerca

La mia ricerca integra biologia molecolare, genomica comparata e bioinformatica funzionale per comprendere come i pathway lipidici bioattivi contribuiscano alla fisiologia, alle risposte allo stress e alle interazioni ecologiche negli organismi marini. Prima del dottorato, ho sviluppato e testato nuovi sistemi di allevamento per tunicati sia solitari sia coloniali, creando una piattaforma sperimentale per affrontare quesiti di ecologia chimica a livello di organismo e di comunità. In questo contesto, ho studiato le interazioni tra Botryllus schlosseri ed estratti della diatomea bentonica Cocconeis scutellum, ottenendo evidenze preliminari che una molecola nota in natura come induttore di inversione sessuale nel gamberetto Hippolyte inermis possa inibire il settlement larvale di Botryllus, conferendo verosimilmente un vantaggio competitivo attraverso la limitazione dell’accesso al substrato.
Un secondo filone di lavoro, emerso da questi approcci basati sulla coltura, ha riguardato le relazioni ospite–simbionte e ospite–parassita nei tunicati. In particolare, ho analizzato il copepode Pachypygus gibber, precedentemente considerato commensale di Ciona robusta (e di altri tunicati) e le mie osservazioni ne hanno supportato la reinterpretazione come parassita in sensu lato, sulla base di marcati effetti negativi sulla fitness dell’ospite. In condizioni sperimentali, l’infestazione è risultata associata a un forte deterioramento delle fitness della prole, con un collasso del recruitment entro pochi giorni dal settling, evidenziando come associazioni criptiche possano avere conseguenze demografiche sproporzionate nelle popolazioni bentoniche marine.

Durante il dottorato, mi sono focalizzato sulle diatomee come modelli marini trattabili per analizzare la diversità evolutiva e funzionale del pathway delle prostaglandine. Un tema centrale del mio lavoro è il pathway mining: l’identificazione sistematica, la validazione e la contestualizzazione evolutiva degli enzimi correlati alle prostaglandine attraverso genomi e trascrittomi, integrando ricerche di omologia curate, analisi dell’architettura dei domini e inferenza filogenetica. Questo interesse mi ha portato a padroneggiare un’ampia gamma di pipeline bioinformatiche riproducibili, permettendomi di lavorare in modo integrato su risorse RNA-seq e genomiche (dal mapping delle reads e quantificazione dell’espressione fino all’annotazione genomica evidence-based e ab initio) e di sviluppare framework analitici robusti anche in specie marine non-modello.

Combinando genomica comparata e approcci basati sull’espressione, le mie analisi stanno andando oltre le assunzioni canoniche sulla biosintesi delle prostaglandine. In particolare, i risultati attuali stanno contribuendo a raffinare le ipotesi sull’emergenza e la diversificazione della famiglia delle ciclossigenasi (COX), un sistema enzimatico tradizionalmente considerato cruciale per la produzione di prostaglandine, lungo il lineage animale, includendo metazoi a ramificazione precoce. Utilizzando un dataset comparativo ampliato e una rigorosa valutazione dell’ortologia, sto ottenendo evidenze di un ortologo putativo di COX anche in specie selezionate di spugne (Porifera), il che estenderebbe l’emergenza evolutiva inferita di COX a una posizione più profonda nel lineage dei metazoi. In parallelo, il mio lavoro sta convergendo sempre più verso la biologia dei coralli e i potenziali ruoli del pathway delle prostaglandine nella fisiologia e nella simbiosi degli cnidari. Ho avviato primi esperimenti per esplorare la dinamica del pathway durante la rigenerazione del disco orale nell’anemone mediterraneo Anemonia sp., estendendo lo stesso quadro concettuale allo studio del possibile coinvolgimento della segnalazione mediata da prostaglandine nelle interazioni corallo–Symbiodiniaceae, con l’obiettivo a lungo termine di collegare segnalazione lipidica, rigenerazione e omeostasi ospite–simbionte in condizioni di stress ambientale.

Pubblicazioni

Scibelli, Sebastiano. «Species- and strain-specific gene expression of the prostaglandin pathway in Skeletonema marinoi and Thalassiosira rotula.» Doctor of Philosophy (PhD) thesis The Open University, pubblicazione online ad accesso anticipato, 2025. https://doi.org/10.21954/ou.ro.00104497.

Scibelli, Sebastiano, Mirko Mutalipassi, Iole Di Capua, et al. «Parasitic Pachypygus Gibber Poses a Silent Threat to Reproduction and Development in Ciona Robusta». Scientific Reports 15, fasc. 1 (2025): 34594. https://doi.org/10.1038/s41598-025-18125-4.

Zupo, Valerio, Sebastiano Scibelli, Mirko Mutalipassi, et al. «Coupling Feeding Activity, Growth Rates and Molecular Data Shows Dietetic Needs of Ciona Robusta (Ascidiacea, Phlebobranchia) in Automatic Culture Plants». Scientific Reports 10, fasc. 1 (2020): 11295. https://doi.org/10.1038/s41598-020-68031-0.

Comunità epimegabentoniche: Studio delle comunità epimegabentoniche sottoposte a perturbazioni fisiche

Durata: 22/11/2024 – 30/11/2026

Responsabile scientifico SZN: Maria Cristina Mangano

Nell'ambito dell'accordo attuativo della Strategia Marina (Direttiva 2008/56/CE), la convenzione ISPRA Allegato Tecnico D6-03 disciplina la collaborazione scientifica tra ISPRA e la Stazione Zoologica Anton Dohrn (SZN) per lo "Studio delle comunità epimegabentoniche sottoposte a perturbazioni fisiche". L'obiettivo centrale è il monitoraggio e la valutazione dell'integrità dei fondali marini (Descrittore 6), con un focus specifico sull'impatto che le attività di pesca esercitano su queste comunità bentoniche vulnerabili.

Obiettivi

Il progetto si sviluppa in tre fasi operative.

1. “Sviluppo metodologico” che vede la SZN impegnata in un Gruppo di Lavoro di Esperti Nazionali. Le attività principali includono: la definizione di protocolli metodologici standardizzati per indagare le comunità sottoposte a perturbazioni da pesca; l'organizzazione di due incontri tecnico-scientifici per sviluppare tali metodi e un incontro finale per illustrare i risultati della standardizzazione.

2. “Campagne in mare e analisi” che è il cuore operativo del progetto. La SZN organizzerà ed eseguirà 5 campagne in mare nel Mar Tirreno. Le attività specifiche comprendono: Pianificazione logistica e prelievo dei campioni secondo i protocolli definiti nella Fase A; Analisi dei campioni (sia a bordo che in laboratorio) e verifica degli standard di qualità; Analisi congiunta dei dati raccolti tra SZN e ISPRA.

3. "Reporting e Sintesi Finale” L'ultima fase, è dedicata alla stesura di un report tecnico-scientifico completo che raccolga tutti i risultati oggetto della convenzione e delle attività sperimentali.

Tecnologie ad alta risoluzione per il monitoraggio di rifiuti marini e rilevamento di effetti sugli ecosistemi marini protetti, verso un sistema di rilevamento rapido transfrontaliero

Programma: Interreg VI-A Italia-Malta

Durata: 02/05/2025 – 02/11/2027

Nel contesto del programma di cooperazione transfrontaliera Interreg V-A Italia-Malta, il progetto TecMAReco affronta la sfida critica della plastica e dei rifiuti marini (marine litter) che minacciano la salute degli ecosistemi dell’area transfrontaliera tra Sicilia e Malta. L'iniziativa si focalizza sull'integrazione di sistemi di telerilevamento e monitoraggio in-situ ad alta risoluzione per identificare in modo mirato l'accumulo di rifiuti e analizzarne l'impatto biologico sulle aree marine protette. L'obiettivo è creare un sistema di allerta rapido e condiviso tra Italia e Malta, standardizzando i protocolli di rilevamento transfrontaliero dai fiumi in mare, attraverso approcci partecipativi di citizen science, e attraverso la creazione di una rete di portatori di interesse e fasi di test di soluzioni di riuso dei materiali plastici, per una governance coordinata e tempestiva delle emergenze ambientali.

Obiettivi

Il progetto si propone di sviluppare un framework tecnologico e metodologico per il monitoraggio precoce dei rifiuti marini e la protezione degli habitat sensibili.

Per il raggiungimento di tali traguardi, l'iniziativa si articola nelle seguenti linee d'azione:

Sviluppo di sistemi di monitoraggio ad alta risoluzione: implementazione di tecnologie ottiche e acustiche avanzate (sensori satellitari, droni e ROV) per il rilevamento, la mappatura e la quantificazione dei rifiuti marini in aree marine protette e siti Natura 2000;

Valutazione degli impatti sul funzionamento degli ecosistemi: studio approfondito degli effetti dei contaminanti associati ai rifiuti sugli organismi marini (bioindicatori) e sugli habitat vulnerabili, per quantificare il danno ecologico reale;

Creazione di un sistema di rilevamento rapido (Early Warning): implementazione di una piattaforma transfrontaliera italo-maltese per lo scambio di dati in tempo reale, volta a facilitare interventi di mitigazione, riuso e rimozione coordinati tra le autorità competenti;

Armonizzazione dei protocolli: standardizzazione delle metodologie di campionamento e analisi tra i partner italiani e maltesi per garantire la comparabilità dei dati e la creazione di linee guida comuni per la gestione dei rifiuti marini (da terra a mare);

Trasferimento tecnologico e sensibilizzazione: formazione del personale tecnico delle agenzie ambientali e coinvolgimento degli stakeholder locali (pescatori, ONG e gestori di aree protette), cittadini in attività di citizen science e beach cleaning, per una protezione sostenibile e condivisa del patrimonio marino.

Coordinatore: Stazione Zoologica Anton Dohrn, Sicily Marine Centre

Responsabili scientifici SZN: Maria Cristina Mangano, Claudio Berti

Partner:

University of Malta, Malta

Università degli Studi di Palermo, Italia

ARPA Sicilia - Agenzia Regionale per la Protezione dell'Ambiente, Italia

Università degli Studi di Catania, Italia

South Side s.r.l., Italia

Zibel ONG, Malta

Regione Siciliana - Dipartimento della Pesca Mediterranea, Italia

Unraveling environmental and anthropogenic factors ShaPing the snow microbiome and antibiotic REsistome At Dome C (Antarctica)

Programma: Programma Nazionale di Ricerca in Antartide (PNRA)

Durata: 3 Novembre 2025 – 2 Novembre 2027

I contaminanti organici tradizionali ed emergenti hanno sollevato crescenti preoccupazioni a causa della loro persistenza, del loro potenziale di trasporto e della loro tossicità. Le regioni polari sono sistemi eco-ambientali speciali e generalmente utilizzate come importante area di riferimento globale. L'aumento delle attività umane e della presenza in Antartide può avere un impatto notevole su scala locale, generando inquinamento ambientale. Tra gli inquinanti di interesse vi sono i prodotti per la cura personale (ad esempio detergenti, saponi, lozioni, dentifrici, creme solari, profumi e creme idratanti), le microplastiche e i prodotti farmaceutici (ad esempio antibiotici e loro residui, analgesici, antinfiammatori e antidepressivi). Considerando l'efficacia della neve nel catturare gli inquinanti atmosferici, la neve funge da importante serbatoio per la distribuzione degli inquinanti tra le diverse matrici nelle regioni polari (trappola fredda). In particolare, la cattura e la rimobilizzazione degli inquinanti attraverso la deposizione e lo scioglimento della neve in condizioni di cambiamento climatico globale possono aumentare l'impatto fondamentale sullo scambio di inquinanti tra le matrici ambientali. Ciò potrebbe influenzare l'ecologia microbica (biodiversità e ruoli ecologici) negli ecosistemi innevati, ad esempio stimolando lo sviluppo di resistenza agli antibiotici nella neve e la sua diffusione attraverso l'atmosfera e lo scioglimento della neve. Nonostante questi potenziali impatti, l'impatto antropico sul resistoma antibiotico della neve rimane da chiarire. Con SPREAD, campioni di neve sottoposti a diversi livelli di antropogeni

Obiettivi

Gli obiettivi specifici saranno:

- valutare la distribuzione spaziale e le dinamiche temporali dell'intera biodiversità

- valutare la presenza e la diffusione di prodotti per la cura personale, farmaci e microplastiche

- descrivere il resistoma e valutare la diffusione della resistenza agli antibiotici e degli agenti patogeni

- analizzare la risposta delle comunità microbiche ai contaminanti presenti nella neve

- caratterizzare la comunità batterica vitale per la biodiversità e le attività metaboliche

Coordinatore: Angelina Lo Giudice, CNR-ISP

Responsabile scientifico SZN: Carmen Rizzo

Partner:

Consiglio Nazionale delle Ricerche, Istituto di Scienze Polari

Stazione Zoologica Anton Dohrn

Università diPisa

Assessing spillover from marine protected areas to adjacent fisheries: Mediterranean and Black Seas

Programma: European project (CINEA/MARE European Commission)

Durata: 01/07/2023 – 30/06/2026

Le aree marine protette (AMP), e in particolare le aree a protezione integrale, possono sostenere le attività di pesca attraverso lo spillover di biomassa ittica verso le zone di pesca adiacenti. Lo spillover si verifica quando popolazioni all’interno delle aree protette esportano giovanili e adulti oltre i confini dell’AMP, con potenziali aumenti delle catture e dei benefici economici. Tuttavia, l’entità e l’efficacia dello spillover sono altamente variabili e dipendono da condizioni ecologiche e gestionali. Tra i fattori chiave figurano ad esempio la dimensione dell’AMP, il livello di enforcement, la continuità degli habitat, la presenza di aree a protezione parziale, la mobilità delle specie e la pressione di pesca lungo i confini. Rafforzare le evidenze scientifiche sui processi di spillover è quindi essenziale per valutare il reale potenziale delle AMP nel conciliare la conservazione della biodiversità con gli obiettivi della pesca.

Obiettivi

L’obiettivo di questo progetto è raccogliere e integrare le informazioni esistenti e acquisire nuovi dati per fornire una panoramica del ruolo che le aree marine protette (AMP) possono svolgere per le attività di pesca locali attraverso gli effetti di spillover nel Mar Mediterraneo e nel Mar Nero. Nel complesso, lo studio contribuirà a migliorare la valutazione dei benefici delle AMP per la pesca locale. Gli obiettivi specifici del progetto sono:

valutare la capacità delle aree a protezione integrale e parziale di esportare biomassa ittica pescabile;

individuare se lo spillover sia mediato da specifiche caratteristiche delle AMP, dai diversi tipi di attività di pesca o dai differenti livelli di sforzo di pesca all’interno delle AMP e lungo i loro confini e/o da caratteristiche delle specie;

identificare AMP con diversi livelli di spillover;

valutare lo spillover ecologico e quello legato alla pesca attraverso due casi di studio nel Mar Mediterraneo.

Lo studio combina: 1) una valutazione su larga scala, basata sulla raccolta di informazioni sullo spillover da dati pubblicati e letteratura grigia in tutto il Mediterraneo e il Mar Nero, e 2) un approccio basato su casi di studio, focalizzato su due casi selezionati nei quali verranno raccolte e analizzate informazioni approfondite sullo spillover ecologico e quello legato alla pesca, al fine di individuare quali caratteristiche delle AMP e delle specie siano i principali fattori che determinano lo spillover.

Coordinatore: Stazione Zoologica Anton Dohrn, Sicily Marine Centre

Responsabile scientifico SZN: Antonio Di Franco

Partners:

Hellenic Center for Marine Research

Interuniversity National Consortium of Marine Sciences

Institute of Oceanology-Bulgarian Academy of Sciences

National Institute for Marine Research and Development “Grigore Antipa”

Institute of Oceanography and Fisheries

Department of Fisheries and Marine Research

Instituto Español de Oceanografia

Centre National de la Recherche Scientifique

Potential Role of Sea Ice change in controlling Mercury in coastal Antarctic Areas

Programma: Programma Nazionale di Ricerca in Antartide (PNRA)

Durata: 11 luglio 2024 – 11 luglio 2027 (su proroga)

Il mercurio è un oligoelemento tossico presente ovunque nell'atmosfera, dove può depositarsi rapidamente nell'idrosfera o nella criosfera e passare negli ecosistemi vicini. Si ritiene che l'Antartide sia un pozzo durante la notte polare e una fonte durante il giorno polare, anche se questo semplice schema è complicato dalla chimica atmosferica. I radicali dell'ossigeno e del bromo possono aumentare l'ossidazione del mercurio atmosferico in forme ioniche che possono depositarsi più rapidamente. Si sospetta che questi processi di ossidazione siano più rapidi sopra il ghiaccio marino durante la primavera, quando si verifica la cosiddetta esplosione del bromo. Il nostro obiettivo è quello di effettuare misurazioni atmosferiche del bromo e combinarle con le misurazioni dell'ozono e degli NOx già effettuate presso MZS, monitorando al contempo le concentrazioni atmosferiche di mercurio utilizzando uno strumento Tekran 2537X. A complemento di queste misurazioni sul campo, campioni di neve, campioni di ghiaccio, campioni di mare e campioni di aria passivi prelevati in diversi punti ci consentiranno di iniziare a quantificare e collegare i diversi comparti ambientali, i processi di deposito e il ciclo dei metalli. Inoltre, all'interno degli stessi campioni, miriamo a studiare la presenza del mer-operone che codifica la resistenza al mercurio nei batteri, poiché sospettiamo che dopo la rottura del ghiaccio marino, i processi biologici diventino importanti nell'emissione di mercurio dalla superficie del mare. Queste misurazioni, insieme alle traiettorie a ritroso delle masse d'aria utilizzando modelli lagrangiani (FLEXPART e HYSPLIT), dovrebbero aiutarci a dare un contributo valido alla comprensione

Obiettivi

Obiettivo 1) Allestire una stazione per l'analisi continua del mercurio gassoso totale (TGM) nell'aria e la raccolta di aerosol per l'analisi del bromo e del mercurio particolato presso MZS.

Obiettivo 2) Rilevare le concentrazioni di mercurio nella neve, nel ghiaccio marino, nelle acque di fusione glaciale e nelle acque marine superficiali e sotterranee della baia di Tethys e nelle immediate vicinanze della baia di Terra Nova.

Obiettivo 3) Caratterizzazione filogenetica delle comunità batteriche totali e rilevamento molecolare di specifici geni di resistenza all'interno di campioni naturali, e correlazione della loro abbondanza con le concentrazioni di Hg rilevate.

Obiettivo 4) Isolamento di ceppi batterici da campioni di ghiaccio marino, neve e acqua di fusione glaciale per studiare la presenza del mer-operone che codifica la resistenza al mercurio nei batteri.

Obiettivo 5) Studiare le variabili che influenzano le variazioni giornaliere del mercurio nell'atmosfera, l'eventuale rideposizione del mercurio e in quali condizioni, con una stima reale della quantità di mercurio riciclata tra l'aria e il manto nevoso.

Obiettivo 6) Comprendere in che modo e in che misura le variazioni del ghiaccio marino sulla costa possono influenzare il ciclo del mercurio.

Coordinatore: Cairns Warren Raymond Lee, CNR-ISP

Responsabile scientifico SZN: Carmen Rizzo

Partner:

Consiglio Nazionale delle Ricerche, Istituto di Scienze Polari

Stazione Zoologica Anton Dohrn

Università di Perugia

Decarbonisation of the fishing fleet in the Mediterranean and Black Sea

“Framework Contract for the provision of scientific advice for the Mediterranean and the Black Sea” FRAMEWORK CONTRACT – EASME/EMFF/2020/OP/0021

Programma: Executive Agency for Small and Medium-sized Enterprises (EASME), EMFAF - European Maritime, Fisheries and Aquaculture Fund

Durata: 01/01/2024 – 10/03/2026

La transizione verso la neutralità climatica rappresenta una sfida cruciale per il settore ittico, oggi fortemente condizionato dall'instabilità dei prezzi del carburante e dalla necessità di ridurre le emissioni. In questo scenario, il progetto DecarbonyT promuove l'innovazione tecnologica nel Mediterraneo e nel Mar Nero, focalizzandosi sull'ottimizzazione delle attrezzature da traino per coniugare sostenibilità ambientale e redditività economica.

Obiettivi

Il progetto punta a tracciare una rotta strategica per il potenziamento delle flotte pescherecce ad alto potenziale. Lo scopo centrale è determinare l'impatto reale dell'impiego di reti a strascico ottimizzate sulla riduzione dei consumi, favorendo così un percorso di decarbonizzazione concreto e misurabile.

Per il raggiungimento di tali traguardi, il progetto si articola in una serie di Subtask suddivisi in un Task di gestione e coordinamento (Task 0) e in quattro Task tecnici (Task 1-4) tra loro strettamente interconnessi:

Task 1 - Consolidamento e diagnosi: analisi delle conoscenze esistenti sui consumi energetici e sulle soluzioni tecnologiche, con l'attuazione di audit energetici per definire i parametri di riferimento (baseline) nelle specifiche combinazioni area/attrezzo;

Task 2 - Monitoraggio: acquisizione di nuovi dati dettagliati per tipologia di pesca (métier);

Task 3 - Supporto decisionale: analisi dei dati raccolti per fornire agli operatori una guida utile a valutare le implicazioni pratiche, in particolare di natura economica, derivanti dall'adozione di diverse soluzioni di efficienza energetica;

Task 4 - Disseminazione: coinvolgimento degli stakeholder e diffusione dei risultati del progetto.

Sito web: https://decarbonyt.eu/

Coordinatore: National Research Council (CNR) – Italia

Responsabile scientifico SZN: Maria Cristina Mangano

Partner:

Stazione Zoologica Anton Dohrn (SZN) – Italia

AquaBioTech Group (ABT) – Malta

Centro Interuniversitario di Biologia Marina ed Ecologia Applicata (CIBM) – Italia

Fondazione COISPA (COISPA) – Italia

Consorzio Nazionale Interuniversitario per le Scienze del Mare (CONISMA) – Italia

Fisheries Research Institute (FRI) – Grecia

Hellenic Centre for Marine Research (HCMR) – Grecia

Institute of Marine Science – Spanish National Research Council (ICM-CSIC) – Spagna

Institute of Oceanography - Spanish National Research Council (IEO-CSIC) – Spagna

Institute of Oceanology – Bulgarian Academy of Sciences (IO-BAS) – Bulgaria

Institute of Oceanography and Fisheries (IOF) – Croazia

National Institute for Marine Research and Development (NIMRD) – Romania

Nisea Società Cooperativa (NISEA) – Italia

University of Thessaly (UTH) – Grecia

WWF Mediterranean (WWF) – Italia

Differens Digital, Marketing, Innovation - Italia

1. Locatello L, Fonsatti E, Detillo P, Borgheresi O, Guidi L, Grassi E, Bortoletti M, Radaelli G, Pascoli F, Bertotto D (2026) Efficacy of glyoxal acid-free (GAF®) as a non-toxic fixative for fish gonads, gametes and larvae: widespread implications for laboratory studies, field sampling and applied aquaculture. Reproduction, Fertility and Development 38(2):RD25137. https://doi.org/10.1071/RD25137

2. Mehr S, Castoe T, Daly M, Jungo F, Kirchhoff KN, Koludarov I, Mackessy SP, Macrander J, Naidu P, Modica MV, Sanchez EE, Zancolli G, Holford M. (2026) A Proposed Unified, Scalable Platform for Integrative Research on Venomous Species. Gigascience giaf153. https://doi.org/10.1093/gigascience/giaf153

3. Nocella E, Fassio G, Lemarcis T, Zaharias P, Tamagnini D, De Leo N, Puillandre N, Modica MV, Oliverio M (2026) A phylogenomic and morphometric reassessment of Ovulidae highlights host-related shell shape evolution. Molecular Phylogenetics and Evolution 217:108545. https://doi.org/10.1016/j.ympev.2026.108545

4. Oyarzún M, Schmidt CV, Ponte G, Fiorito G, Olsen K and Mouritsen OG (2026) Effect of slaughtering method on umami compounds in meat of Octopus vulgaris. International Journal of Gastronomy and Food Science, 23-101437. https://doi.org/10.1016/j.ijgfs.2026.101437

5. Piccardo M, Mutalipassi M, Pittura L, Sepe RM, De Luca P, Besseau L, Renzi M, Gorbi S, Laudet V, Pallavicini A, Sordino P, Terlizzi A (2026) From antioxidant defenses to transcriptomic signatures: concentration-dependent responses to polystyrene nanoplastics in reef fish. Microplastics, 5: 14. https://doi.org/10.3390/microplastics5010014

6. Pieroni EM, O'Connor V, Holden-Dye L, Imperadore P, Fiorito G, Dillon J (2026) Identification of molecular nociceptors in Octopus vulgaris through functional characterisation in Caenorhabditis elegans. Biology Open, 15(1):bio062268. https://doi.org/10.1242/bio.062268

7. Ringeval A, Modica MV, Kantor Y, Jimenez Tenorio M, Garcia Galindo JC, Puillandre N, Farhat S (2026) Multi-omics characterization of toxin expression and producing organs in the predatory gastropods Monoplex corrugatus and Stramonita haemastoma. BMC Genomics 10.1186/s12864-026-12592-3. https://doi.org/10.1186/s12864-026-12592-3

8. Salvador P, Amodio P, Grech D, Sponza S, & Balestrieri R (2026) Do diving seabirds exploit landscape elements for underwater ambushing?. Behaviour 163(1),85-94. https://doi.org/10.1163/1568539X-bja10356

• Aguzzi J, Chatzidouros E, Chatzievangelou D, Clavel-Henry M, Flögel S, Bahamon N, Tangerlini M, Thomsen L, Picardi G, Navarro J, Masmitja I, Robinson N, Nattkemper T, Stefanni S, et al. (2025) A digital-twin strategy using robots for marine ecosystem monitoring. Ecological Informatics 91: 103409. https://doi.org/10.1016/j.ecoinf.2025.103409

• Albano PG, Kallmeyer SKC, Vetina AA, Tibiriça Y, De Abreu DC, Modica MV (2025) A unique historical baseline uncovers harvesting impacts on intertidal molluscs at Inhaca Island, southern Mozambique. ICES Journal of Marine Science 82(11): fsaf206. https://doi.org/10.1093/icesjms/fsaf206

• Altieri F, Smaldone G, Sarnacchiaro G, Negueruela S, Scotto Di Fasano M, Mirabelli P, Cianflone A, De Matteo A, Beneduce G, Parasole R, Salvatore M, Buono L (2025) Identification of a circular RNA isoform of WASHC2A as a prognostic factor for high-risk paediatric B-ALL patients. Biomedicine & Pharmacotherapy 177: 116903. https://doi.org/10.1016/j.biopha.2024.116903

• Annona G, Tarallo A, Locatello L, De Luca P, Modica MV (2025) Morphology of spines and milking practices in venomous fishes. Discover Animals 2: 53.
https://doi.org/10.1007/s44338-025-00110-w

• Anselmi C, Sepe RM, Manni L, Sordino P (2025) Editorial: Tunicates in ecological developmental biology. Frontiers in Ecology and Evolution 13: 1549081. https://doi.org/10.3389/fevo.2025.1549081

• Arrigoni R, Desiderà E, Bava S, Morri C, Bianchi CN, Guidetti P (2025) A peculiar coral formation in the Mediterranean Sea, and its associated biota. Ecology 106(6): e70097. https://doi.org/10.1002/ecy.70097

• Báez JC, Akyol O, Azzurro E, Battaglia P, Belmonte-Gallegos A, Christidis G, Crocetta F, Dalyan C, Gönül Y, Grati F, Greco S, Gubili C, Kesici NB, Lipej L, Mancini E, Mavric B, Orenes-Salazar V, Ceacero JAO, Pipitone C, Poursandinis D, Romeo T, et al. (2025) New records of rarely reported species in the Mediterranean Sea. Mediterranean Marine Science 26. https://doi.org/10.12681/mms.40675

• Bagnoli S, Drago DL, Astoricchio E, Chiavacci E, Fronte B, Cellerino A, Terzibasi Tozzini E (2025) Comparative Analysis of Localization and Composition of Adult Neurogenic Niches in the Chondrichthyans Raja asterias and Torpedo ocellata. Int. J. Mol. Sci. 26(8): 3563. https://doi.org/10.3390/ijms26083563

• Battaglia P, Malara D, Pedà C, Ciraolo D, Romeo T (2025) Temporal changes in the diet composition of swordfish, Xiphias gladius (Linnaeus, 1758), in a Mediterranean foraging and reproductive ground. Mar. Environ. Res. 213. https://doi.org/10.1016/j.marenvres.2025.107724

• Bilcke G, Campese L, Annunziata R, et al. (2025) Conserved genetic markers reveal widespread diatom sexual reproduction in the global ocean. Nature Communications 16: 10029. https://doi.org/10.1038/s41467-025-65296-9

• Boni R, Ruggiero R, De Luca F, Preziosi G, Ferrara MA, Ostuni A, Guerriero S, Gallo A, Murano C, Cecchini Gualandi S (2025) Enhancing Stallion Semen Cryopreservation: Selected Antioxidant Extracts and Sperm Freezability. Antioxidants 14(11): 1363. https://doi.org/10.3390/antiox14111363

• Bosso L, Raffini F, Ambrosino L, Panzuto R, Gili C, Chiusano ML, Miralto M (2025) Geoportals in Marine Spatial Planning: state of the art and future perspectives. Ocean and Coastal Management 266: 107688. https://doi.org/10.1016/j.ocecoaman.2025.107688

• Bosso L, Saviano S, Abagnale M, Bellardini, Bolinesi F, Botte V, Buondonno A, Carotenuto Y, Casotti R, Chiusano ML, Cipolletta F, Conversano F, De Domenico F, Del Gaizo G, Donnarumma V, Furia M, Iudicone D, Kokoszka F, Laface F, Licandro P, Mangoni O, Margiotta F, Mazzocchi MG, Miralto M, Montresor M, Pansera M, Pedà C, Percopo I, Raffini F, Russo L, Romeo T, Saggiomo M, Sarno D, Trano AC, Vannini J, Vargiu M, Zampicinini G, Zingone A, Cianelli D, D'Alelio D (2025) GIS-based integration of marine data for assessment and management of a highly anthropized coastal area. Scientific Reports 5: 16200. https://doi.org/10.1038/s41598-025-00206-z

• Breedveld MC, Borgheresi O, Devigili A, Gasparini C (2025) Stunned by a heatwave: experimental heatwaves alter juvenile responsiveness to the threat of predation. Ecology and Evolution 15: e71447. https://doi.org/10.1002/ece3.71447

• Casale C, Colella A, Cruoglio M, Mirra S, Iaccarino E, Lioi MB, Fusco F, Sandomenico A, Leonardi A, Zazzeroni F, Pescatore A (2025) GADD45β inhibits RIPK3-mediated NF-κB activation by interfering with NEMO-RIPK1-RIPK3 interactions. Cell Death Discovery 12(1): 41. https://doi.org/10.1038/s41420-025-02894-y

• Castoe TA, Daly M, Jungo F, Kirchhoff KN, Koludarov I, Mackessy S, Macrander S, Mehr S, Modica MV, Sanchez EE, Zancolli G, Holford M (2025) A Vision for VenomsBase: An Integrated Knowledgebase for the Study of Venoms and Their Applications. Integrative Organismal Biology 7(1): obaf026. https://doi.org/10.1093/iob/obaf026

• Chianese T, Galati M, Cappello T, Maisano M, Lettieri G, Marinaro C, Piscopo M, Fasciolo G, Gravato C, Napolitano G, Paolella G, Locascio A, Scudiero R, Rosati L (2025) Exploring the impact of polystyrene microplastic beads on male gonads of the marine mussel, Mytilus galloprovincialis. Environmental Toxicology. https://doi.org/10.1002/tox.24581

• Chiappa G, Fassio G, Modica MV, Hoarau A, Le Quément M, Puillandre N, Oliverio M (2025) Sexual dimorphism and geographic polymorphism in Raphitoma purpurea (Neogastropoda: Raphitomidae). Journal of Molluscan Studies 91(3): eyaf002. https://doi.org/10.1093/mollus/eyaf002

• Chiappa G, Fassio G, Modica MV, Puillandre N, Oliverio M (2025) What Is the Population Structure of Poecilogonic Species? Evidence From Large-Scale Genotyping in a Neogastropod Lineage (Conoidea: Raphitoma). Molecular Ecology 34: e70170. https://doi.org/10.1111/mec.70170

• Chiavacci E, Camera R, Costa M, Fronte B, Terzibasi Tozzini E, Cellerino A (2025) Nerve Growth Factor Receptor (NGFR/p75NTR) of the Small-Spotted Catshark (Scyliorhinus canicula): Evolutionary Conservation and Brain Function. Journal Comparative Neurology 533(4): e70049. https://doi.org/10.1002/cne.70049

• Chiavacci E, Steffensen KF, Delaroche P, Astoricchio E, Poulsen AB, Brayson D, Garibaldi F, Lanteri L, Pinali C, Valente GR, Vignati F, Steffensen JF, Shiels H, Terzibasi Tozzini E, Cellerino A (2025) Resilience to cardiac aging in Greenland shark Somniosus microcephalus. bioRxiv 2025.12.20.695706. https://doi.org/10.64898/2025.12.20.695706

• Clavel-Henry M, Flögel S, Toma Mihai D, Llorach-Tó G, Bahamon N, Picardi G, Francescangeli M, Quevedo J, Robinson N, Ferrari M, Chatzievangelou D, Sánchez-Márquez A, Espina P, Ribera-Altimir J, Mirimin L, Woo S, Nattkemper TW, Fanelli E, Gambi C, Gallegati S, Marcellini F, De Luca P, Stefanni S, Vignesh G, Menon VG, Rossius JE, de Lecea AM, Costa C, Aguzzi J (2025) A roadmap for designing a virtual interface to explore a digital twin of the oceans for marine ecosystems monitoring. Ecological Informatics 92: 103483. https://doi.org/10.1016/j.ecoinf.2025.103483

• Cocurullo M, Kirwan JD, Arnone MI (2025) Phenotypic response to food availability in sea urchin larvae and impact of light during development and growth. Frontiers in Ecology and Evolution 13: 1548208. https://doi.org/10.3389/fevo.2025.1548208

• Coscia MR, Marino R, Melillo D (2025) Editorial: Cell-mediated innate immunity in aquatic invertebrates and fish: what's new? Frontiers in Immunology 16: 1749877. https://doi.org/10.3389/fimmu.2025.1749877

• De Vincenzis L, Battaglia P, Palummo V, Milisenda G, Canese S, Cardone F, Pica D, Salvati E, Stenico F, Consoli P, Costa V, Giova A, Greco S, Romeo T (2025) No place to hide: Assessing habitat shifts of Benthocometes robustus from Cold-Water corals to marine litter in the Mediterranean Sea. Marine Environmental Research 214: 107773. https://doi.org/10.1016/j.marenvres.2025.107773

• De Vivo G, Pelettier E, Feuda R, D'Aniello S (2025) An ocean of opsins. Genome Biology and Evolution 17(11): evaf189. https://doi.org/10.1093/gbe/evaf189

• Di Carluccio C, Nieto-Fabregat F, Cerofolini L, Abreu C, Padilla-Cortés L, Gheorghita GR, Masi AA, Buono L, Gumah Adam Ali M, Lamprinaki D, Molinaro A, Juge N, Smaldone G, Vaněk O, Fragai M, Marchetti R, Silipo A (2025) Fusobacterium nucleatum Lipopolysaccharides O-Antigen Defines a Novel Siglec7 Binding Epitope. JACS Au 5(11): 5367-5380. https://doi.org/10.1021/jacsau.5c00810

• Di Fraia D, Marino A, Lee JH, Kelmer Sacramento E, Baumgart M, Bagnoli S, Balla T, Schalk F, Kamrad S, Guan R, Caterino C, Giannuzzi C, Tomaz da Silva P, Sahu AK, Gut H, Siano G, Tiessen M, Terzibasi Tozzini E, Fornasiero EF, Gagneur J, Englert C, Patil KR, Correia-Melo C, Nedialkova DD, Frydman J, Cellerino A, Ori A (2025) Altered translation elongation contributes to key hallmarks of aging in the killifish brain. Science 389(6759): eadk3079. https://doi.org/10.1126/science.adk3079

• Domínguez-Pérez D, Agüero-Chapin G, Leone S, Modica MV (2025) SeqLengthPlot v2.0: an all-in-one, easy-to-use tool for visualizing and retrieving sequence lengths from FASTA files. Bioinformatics Advances 5(1): vbae183. https://doi.org/10.1093/bioadv/vbae183

• Fedosov AE, Zaharias P, Lemarcis T, Modica MV, Holford M, Oliverio M, Kantor YI, Puillandre N (2025) Phylogenomics of Neogastropoda: The Backbone Hidden in the Bush. Systematic Biology 73(3): 521-531. https://doi.org/10.1093/sysbio/syae010

• Ferri S, Evrard A, Canese S, Romeo T, Greco S, Passarelli A, Favaro L, Caruso F (2025) A wave glider for passive acoustic monitoring of cetaceans and anthropogenic sources in the central Mediterranean Sea. Scientific Reports 16: 2347. https://doi.org/10.1038/s41598-025-32142-3

• Fossi MC, Baini M, Galli M, Tepsich P, Grossi F, Concato M, Giani D, Rosso M, Borroni A, Romeo T, Panti C (2025) Biodiversity at risk in the SPAMI Pelagos Sanctuary: The impact of marine litter on biota. The Science Total Environment 964: 178527. https://doi.org/10.1016/j.scitotenv.2025.178527

• Gambardella C, Fernández-Corredor E, Moro S, Echwiki K, Jenrette JF, Lemsi C, Schallert RJ, Shea BD, Chatti Zammit M, Cerrano C, Colloca F, Romeo T, Navarro J, Ferretti F (2025) Trophic niche partitioning between the white shark (Carcharodon carcharias) and the shortfin mako (Isurus oxyrinchus) in the central Mediterranean Sea. Wildlife Research 52: WR25028. https://doi.org/10.1071/WR25028

• Giova A, Peda C, Pica D, Greco S, Romeo T, Spanò N (2025) Identifying a Suitable Digestion Protocol for Microplastic Extraction from Isidella elongata (Esper, 1788): New Insights for cold-water corals. Journal of Hazardous Materials: Plastics 1: 100009. https://doi.org/10.1016/j.hazmp.2025.100009

• Gleadall IG, Villanueva R, Barord GJ, Doubleday Z, Aguado-Giménez F, Akiyama N, Almansa E, Ames CL, Arkhipkin A, Avendaño O, Barrett C, Fiorito G, Imperadore P, Ponte G, et al. (2025) A balanced approach to the potential of octopus aquaculture. Marine Policy 179: 106682. https://doi.org/10.1016/j.marpol.2025.106682

• Gruber CW, Beets I, Boudreault PL, Bolzani VDS, Carlsson J, Fernandes PA, Freissmuth M, Gilles N, Göransson U, Hauser AS, Heinis C, Kool J, Lubell WD, Modica MV, Selent J, Tytgat J, Undheim EAB (2025) Biodiversity2Drugs-Renaissance of exploring nature-derived peptides for GPCR ligand discovery. Br. J. Pharmacol. 182(16): 3691-3694. https://doi.org/10.1111/bph.70072

• Gugliandolo E, Mghili B, Fabrizi F, Gunasekaran K, Smedile F, Inferrera F, Natale S, Romeo T, Arcadi E, Habib SS, Azzaro M, Bottari T, Mancuso M (2025) Antibiotic and Heavy Metal Resistance in Marine Bacteria from Terra Nova Bay (Ross Sea): Insights from Wild Fish and Environmental Samples. Animals 16: 51. https://doi.org/10.3390/ani16010051

• Holzinger C, Ritschard EA, Imperadore P, Ponte G, Albertin CB, Fiorito G, Simakov O (2025) Characterization of C2H2 superfamily expansions in cephalopods and their contribution to nervous system evolution. iScience 113561. https://doi.org/10.1016/j.isci.2025.113561

• Iannello M, Piccinini G, Salatiello F, Forni G, Nicolini F, Valdrè U, Martini M, Martelossi J, Ghiselli F, D'Aniello E, Milani L (2025) New insights into mitochondrial segregation from the Doubly Uniparental Inheritance system in bivalves. BMC Biology 23: 371. https://doi.org/10.1186/s12915-025-02459-6

• Ikonomopoulou MP, Anderluh G, Coskun S, Merello Luna F, Modica MV, Prochazka J, Rivera-de-Torre E, Tarallo A, Violette A (2025) Patentability of natural products from Venomous Organisms: A guide for life science researchers. Toxicon 269: 108927. https://doi.org/10.1016/j.toxicon.2025.108927

• Leone S, Giugliano R, Borgonuovo C, Chiodo F, Molinaro A, Zannella C, De Filippis A, Galdiero M, van Kooyk Y, De Chiara S, Magnabosco C, Di Lorenzo F, Romano G (2025) Structural insights and bioactivity of a cell wall sulfated polysaccharide from the marine diatom Cyclotella cryptica. Int. J. Biol. Macromol. 311: 143611. https://doi.org/10.1016/j.ijbiomac.2025.143611

• Limatola N, Pirozzi M, Caramiello D, Chun JT, Santella L (2025) The Binding of Concanavalin A to the Surface of Intact and Denuded Sea Urchin Eggs Affects the Fertilization Process by Altering the Structural Dynamics of Actin Filaments. Cells 14(23): 1867. https://doi.org/10.3390/cells14231867

• Logan JM, Butler CM, Fuller L, Staudinger MD, Hoffmayer ER, Hanisko D, Varela JL, Medina A, de la Serna JM, Godoy D, Macías D, Golet W, Chase B, MacKenzie BR, Olafsdottir D, Nadeau S, Rodríguez-Marín E, Ciavaglia E, Tinti F, Battaglia P, Romeo T, Andaloro F, Sinopoli M, Karakulak FS, Salman A, Pleizier N, Goñi N, Arrizabalaga H, Itoh T, Ortiz de Zárate V, Jansen T (2025) Characterizing the diet of Atlantic bluefin tuna Thunnus thynnus across its spatial range: a metadata analysis spanning over three decades. Mar Ecol Prog Ser 763: 127-155. https://doi.org/10.3354/meps14875

• Mager S, Manfellotto F, Ruggero A, Di Tuccio V, Cerino F, Accoroni S, Nishimura T, Mikhno M, Fattorini N, Demarstia TT, Arapov A, Skejic S, Rhodes L, Smith K, Longo A, Manzari C, Campbell L, Pesole G, Sanges R, Raffini F, Ruggero MV, Russo MT, Montresor M, Ferrante MI (2025) Genomic diversity in time and space in the toxic diatom Pseudo-nitzschia multistriata. Harmful Algae 142: 102791. https://doi.org/10.1016/j.hal.2024.102791

• Magri MS, Voronov D, Foley S, Martínez-García PM, Franke M, Cary GA, Santos-Pereira JM, Cuomo C, Fernández-Moreno M, Portela M, Gil-Galvez A, Acemel RD, Paganos P, Ku C, Ranđelović J, Rusciano ML, Firbas PN, Gómez-Skarmeta JL, Hinman VF, Arnone MI, Maeso I (2025) Deep conservation of cis-regulatory elements and chromatin organization in echinoderms uncover ancestral regulatory features of animal genomes. Nature Ecology and Evolution 10: 355–371. https://doi.org/10.1038/s41559-025-02941-y

• Modica MV, Leone S, Gerdol M, Greco S, Aurelle D, Oliverio M, Fassio G, El Koulali K, Barrachina C, Dutertre S (2025) The proteotranscriptomic characterization of venom in the white seafan Eunicella singularis elucidates the evolution of Octocorallia arsenal. Open Biology 15(3): 250015. https://doi.org/10.1098/rsob.250015

• Montalbetti E, Seveso D, Farina S, Bava S, Carta E, Castellano L, Galli P, Isa V, Louis YD, Marzaioli R, Moccia D, Papa S, Rutigliano FA, Tamburello L, Arrigoni R (2025) Wildfire ash undermines the physiology of the Mediterranean coral Cladocora caespitosa. Marine Environmental Research 215: 107817. https://doi.org/10.1016/j.marenvres.2025.107817

• Natarajan O, Gibboney SL, Youn MN, Lim SJ, Nguyen F, Pluta N, Atkinson CGF, Liberti A, Kees ED, Leigh BA, Breitbart M, Gralnick JA, Dishaw LJ (2025) Prophage regulation of Shewanella fidelis 3313 motility and biofilm formation with implications for gut colonization dynamics in Ciona robusta. eLife 14: RP103107. https://doi.org/10.7554/eLife.103107

• Negro N, McGill RAR, Borgheresi O, Badalamenti F, Locatello L, Zenone A, Willis T (2025) Stable isotope values from teleost fin membrane as a non-lethal substitute for muscle tissue. Hydrobiologia. https://doi.org/10.1007/s10750-025-06005-x

• Nieto-Fabregat F, Mercogliano M, Cangiano A, Vitiello G, Andretta E, Clifton LA, Vanacore A, Buono L, Campanero-Rhodes MA, Solís D, Di Carluccio C, Pecoraro G, Molinaro A, Smaldone G, Kim JK, Kim DH, Paduano L, Di Lorenzo F, Silipo A (2025) Structure of the Lipopolysaccharide from Paenalcaligenes hominis: A Chemical Perspective on Immune Recognition. JACS Au 5(7): 3311-3327. https://doi.org/10.1021/jacsau.5c00441

• Nydam ML, Gamble D, Gordon T, Hiebert LS, Hutchings B, Liberti A, Mondal J, Moody K, Olhasso M, Popsuj S, Sato A, Oğul Ünal FN, Di Gregorio A (2025) The Second International Symposium on Women in Tunicate Biology. Genesis 63: e70028. https://doi.org/10.1002/dvg.70028

• Paganos P, Arnone M (2025) In preprints: cell type-specific gene regulation through the lens of echinoderms. Development 152: dev205306. https://doi.org/10.1242/dev.205306

• Paganos P, Ullrich-Lüter J, Almazán A, Voronov D, Carl J, Zakrzewski AC, Zemann B, Rusciano ML, Sancerni T, Schauer M, Akar O, Caccavale F, Cocurullo M, Benvenuto G, Croce JC, Lüter C, Arnone MI (2025) Single-nucleus profiling highlights the all-brain echinoderm nervous system. Science Advanced 11: eadx7753. https://doi.org/10.1126/sciadv.adx7753

• Palummo V, Milisenda G, Pica D, Canese S, Salvati E, De Vincenzis L, Battaglia P, Spanò N, Romeo T, Greco S (2025) Ecological role of benthic Vulnerable Marine Ecosystems (VMEs) indicator taxa on soft bottoms. Scientific Reports 15: 26654. https://doi.org/10.1038/s41598-025-10243-3

• Paolella G, Pontoni L, Locascio A, Sirakov M, Scivicco M, Fabbricino M (2025) Evaluation of potential bioaccumulation of Bisphenol A in the mussel Mytilus galloprovincialis. J Environ Manage. 382: 125295. https://doi.org/10.1016/j.jenvman.2025.125295

• Pecoraro G, Leone I, Nuzzo S, Negueruela S, Smaldone G, Buono L (2025) Co-modulation of a circular form of PCDH11Y during neuroendocrine differentiation of prostate cancer. Frontiers in Oncology 15: 1502405. https://doi.org/10.3389/fonc.2025.1502405

• Pedà C, Malara D, Longo F, Laface F, Battaglia P, Berti C, Consoli P, Ponte G, Andrews P, Greco S, Romeo T (2025) Microplastic occurrence in the digestive system and health status assessment in a commercially important cephalopod species, Sepia officinalis from the Gulf of Patti (southern Tyrrhenian Sea). Marine Pollution Bulletin 214: 117780. https://doi.org/10.1016/j.marpolbul.2025.117780

• Pizzulli F, Barjami M, Edelman DB, Fiorito G, Ponte G (2025) Macroscale Connectivity in the Octopus brain. bioRxiv 2025.05.28.656524. https://doi.org/10.1101/2025.05.28.656524

• Raffini F, De Jode A, Johannesson K, Faria R, Zagrodzka ZB, Westram AM, Galindo J, Rolan-Alvarez E, Butlin RK (2025) Phenotypic divergence and genomic architecture between parallel ecotypes at two different points on the speciation continuum in a marine snail. Molecular Ecology 34: e70025. https://doi.org/10.1111/mec.70025

• Sabroux R (2025) The genus Hedgpethia Turpaeva, 1973 (Pycnogonida: Colossendeidae): a review and a new species. European Journal of Taxonomy 1026: 147-170. https://doi.org/10.5852/ejt.2025.1026.3111

• Sampaio E, Schnell AK, Amodio P (2025) Cognition in multi-species sociality. Current Biology 35(4): R132-R136. https://doi.org/10.1016/j.cub.2025.01.012

• Sansone V, Macedonio F, Poerio T, Vitola G, Bruno L, Piscioneri A, Frappa M, Greco S, Romeo T, Rizzo C, Giorno L, Mazzei R (2025) Biofunctionalized and bioluminescent PVA membrane for ATP detection. Journal of Membrane Science 737. https://doi.org/10.1016/j.memsci.2025.124772

• Savino I, Nobahar A, Da Silva JP, Cotugno P, Notariale R, Giuseppe C, Uricchio VF, Gallo A (2025) New insights into car tire rubber particle toxicity: chemical composition and ecotoxicity assessment of leachate on gamete quality of the Mediterranean mussel Mytilus galloprovincialis. Environment International 202: 109587. https://doi.org/10.1016/j.envint.2025.109587

• Sebé-Pedrós A, Tanay A, Lawniczak MKN, Arendt D, Aerts S, Archibald J, Arnone MI, Blaxter M, Cleves P, Coelho SM, et al. (2025) The Biodiversity Cell Atlas: mapping the tree of life at cellular resolution. Nature 645: 877–885. https://doi.org/10.1038/s41586-025-09312-4

• Terraneo TI, Benzoni F, Arrigoni R, Berumen ML, Mariappan KG, Antony CP, Harrison HB, Payri CE, Huang D, Baird AH (2025) A genomic approach to Porites (Anthozoa: Scleractinia) megadiversity from the Indo-Pacific. Molecular Phylogenetics and Evolution 203: 108238. https://doi.org/10.1016/j.ympev.2024.108238

• Terraneo TI, Houlbreque F, Arrigoni R, Longari B, Berumen ML, Hume BCC, Fiat S, Rodolfo-Metalpa R, Payri CE, Voolstra CR, Benzoni F (2024) Coral-associated Symbiodiniaceae dynamics during the 2016 mass bleaching event in New Caledonia. Coral Reefs 43(4): 1127-1132. https://doi.org/10.1007/s00338-024-02510-y

• Tibone M, Francescangeli M, Stefanni S, Aguzzi J, O'Neill B, Del Rio J, Mihai Toma D, Mirimin L (2025) Enhancing fish community monitoring at a cabled observatory by combining environmental DNA and imaging analysis. Journal of Fish Biology 2025: 1-6. https://doi.org/10.1111/jfb.70096

• Tibone M, Stefanni S, Aguzzi J, O'Neill B, Mirimin L (2025) A multi-marker fish eDNA metabarcoding study comparing Illumina and Nanopore high-throughput sequencing platforms. Authorea. https://doi.org/10.22541/au.173797976.60860858/v1

• Toulis V, Marfany G, Mirra S (2025) Marine Derived Strategies Against Neurodegeneration. Marine Drugs 23(8): 315. https://doi.org/10.3390/md23080315

• Verni S, Langeneck J, Silverj A, Stefanni S, Musco L, Castelli A (2025) Diversity and biogeography of mesophotic and bathyal Onuphidae (Annelida: Eunicida) of the Western Mediterranean sea. Deep Sea Research Part I: Oceanographic Research 220: 104476. https://doi.org/10.1016/j.dsr.2025.104476

• Virgili R, Tanduo V, D'Aniello S, Fontana A, Turon X, Crocetta F (2025) Morphological and behavioural paedomorphosis in a new Mediterranean Heterostigma species (Ascidiacea: Stolidobranchia: Pyuridae): a novel adaptive strategy for ascidians to live in soft-bottom habitats. Invertebrate Systematics 39: IS24103. https://doi.org/10.1071/IS24103

• Zancolli G, Modica MV, Puillandre N, Kantor Y, Barua A, Campli G, Robinson-Rechavi M (2025) Redistribution of Ancestral Functions Underlies the Evolution of Venom Production in Marine Predatory Snails. Molecular Biology and Evolution 42(5): msaf095. https://doi.org/10.1093/molbev/msaf095

• Zinourov Roncalli di Montorio M, Falcone C, Ponte G (2025) Unveiling the Hidden World of Octopus Glia. Brain Behavior and Evolution 100(4): 246–262. https://doi.org/10.1159/000545910

• Zuccarotto A, Russo M, Di Giacomo A, Casale A, Mitrić A, Leone S, Russo GL, Castellano I (2025) Marine-Inspired Ovothiol Analogs Inhibit Membrane-Bound Gamma-Glutamyl-Transpeptidase and Modulate Reactive Oxygen Species and Glutathione Levels in Human Leukemic Cells. Marine Drugs 23(8): 308. https://doi.org/10.3390/md23080308

• Zuccarotto A, Sollitto M, Leclère L, Panzella L, Gerdol M, Leone S, Castellano I (2025) Molecular evolution of ovothiol biosynthesis in animal life reveals diversity of the natural antioxidant ovothiols in Cnidaria. Free Radic. Biol. Med. 227: 117-128. https://doi.org/10.1016/j.freeradbiomed.2024.11.037