Collaboratore Tecnico
Dipartimento di Biologia ed Evoluzione Organismi Marini

Tel. +39 081 5833 228
e-mail: andrea.sommella(at)szn.it

Curriculum Vitae

Breve CV

Laureato in Biotecnologie Mediche presso l’Università degli studi di Napoli Federico II nel 2006.
Nel 2007 svolge un tirocinio di ricerca post-laurea Leonardo Da Vinci presso l’istituto di ricerca agraria INRA a Nantes in Francia, ove si dedica al clonaggio molecolare per l’espressione in batteri di geni isolati da piante, atg4 e atg8, coinvolti nei processi di autofagia.
Dal 2008 al 2014 svolge, presso il TIGEM di Napoli come borsista/contrattista, attività di supporto sperimentale in ricerca preclinica su modelli murini per approcci di terapia genica sostitutiva. Durante questa fase lavorativa aquisisce esperienza nella manipolazione e prelievo d’organi da animali di laboratorio (topi), tecniche di biologia molecolare per il clonaggio e per l’analisi di espressione di proteine, tecniche istologiche e tecniche di analisi sulle preparazioni virali.
Dal 2014 al 2023 lavora come operatore di ricerca presso l’azienda farmacetica Okairos/Reithera, impegnata nello sviluppo pre-clinico e clinico di vaccini di nuova generazione basati su vettori adenovirali per la profilassi e/o la cura di patologie infettive. Durante questo periodo, acquisisce esperienza nelle tecniche finalizzate alla caratterizzazione delle risposte immunitarie sia cellulo-mediate che umorali indotte dai vaccini disegnati dalla company.

Dal Luglio 2023 lavora come collaboratore tecnico nel Dipartimento di Biologia ed Evoluzione degli Organismi Marini (BEOM) presso l’ente di ricerca Stazione Zoologica Anton Dohrn di Napoli.

Principali Pubblicazioni

1. Colella P, Sommella A, Marrocco E, et al. Myosin7a deficiency results in reduced retinal activity which is improved by gene therapy. PLoS One. 2013;8(8):e72027. Published 2013 Aug 26. doi:10.1371/journal.pone.0072027

2. Manfredi A, Marrocco E, Puppo A, et al. Combined rod and cone transduction by adeno-associated virus 2/8. Hum Gene Ther. 2013;24(12):982-992. doi:10.1089/hum.2013.154

3. Trapani I, Colella P, Sommella A, et al. Effective delivery of large genes to the retina by dual AAV vectors. EMBO Mol Med. 2014;6(2):194-211. doi:10.1002/emmm.201302948

4. Trapani I, Toriello E, de Simone S, et al. Improved dual AAV vectors with reduced expression of truncated proteins are safe and effective in the retina of a mouse model of Stargardt disease. Hum Mol Genet. 2015;24(23):6811-6825. doi:10.1093/hmg/ddv386

5. Napolitano F, Merone R, Abbate A, et al. A next generation vaccine against human rabies based on a single dose of a chimpanzee adenovirus vector serotype C [published correction appears in PLoS Negl Trop Dis. 2021 Apr 13;15(4):e0009348]. PLoS Negl Trop Dis. 2020;14(7):e0008459. Published 2020 Jul 15. doi:10.1371/journal.pntd.0008459

6. Napolitano F, Merone R, Abbate A, et al. Correction: A next generation vaccine against human rabies based on a single dose of a chimpanzee adenovirus vector serotype C. PLoS Negl Trop Dis. 2021;15(4):e0009348. Published 2021 Apr 13. doi:10.1371/journal.pntd.0009348

7. Capone S, Raggioli A, Gentile M, et al. Immunogenicity of a new gorilla adenovirus vaccine candidate for COVID-19. Mol Ther. 2021;29(8):2412-2423. doi:10.1016/j.ymthe.2021.04.022

8. Lanini S, Capone S, Antinori A, et al. GRAd-COV2, a gorilla adenovirus-based candidate vaccine against COVID-19, is safe and immunogenic in younger and older adults. Sci Transl Med. 2022;14(627):eabj1996. doi:10.1126/scitranslmed.abj1996

9. Agrati C, Castilletti C, Battella S, et al. Safety and immune response kinetics of GRAd-COV2 vaccine: phase 1 clinical trial results. NPJ Vaccines. 2022;7(1):111. Published 2022 Sep 24. doi:10.1038/s41541-022-00531-8